其他资源：
使用以下方法成功纯化 RNA 的一般指南Monarch 总 RNA 小量提取试剂盒Guidan关于使用 Monarch 总 RNA 小量制备试剂盒时选择样品输入量的重点 RNA 纯化故障排除指南主页工具和资源使用指南全血 RNA 纯化指南全血 RNA 纯化指南The Monarch Total RNA Miniprep Kit (NEB #T2010) 可用于处理新鲜和冷冻血液。使用标准方案，最多可处理 200 µl 血液.可以修改协议，以便在单个色谱柱上处理多达 3 毫升的血液（或 1 毫升的啮齿动物血液），并适当缩放试剂并重新加载色谱柱。对于啮齿动物全血，最大样品输入量为1 毫升。对于处理全血，确保使用 Monarch DNA/RNA 保护试剂 (NEB #T2011) 作为 2X 浓缩液。使用未储存在稳定试剂中的冷冻血液时，在室温下快速解冻如方案中所示，存在 2X Monarch DNA/RNA 保护试剂（涡旋或混合）。对于先前储存在 DNA/RNA 保护试剂中的冷冻全血，让样品平衡 to 处理前室温。将全血与 DNA/RNA 保护试剂混合后，在室温下执行所有后续步骤。全血方案中不使用 RNA 裂解缓冲液。全血样本在与提供的 2X Monarch DNA/RNA 保护试剂浓缩液混合后被裂解。蛋白酶 K 处理后将异丙醇添加到血样混合物中，为 RNA 结合 RNA 纯化柱创造有利的结合条件。您将跳过 gDNA移除柱步骤并向流穿液中添加乙醇，而是将异丙醇-样品混合物直接加载到 RNA 纯化柱上。建议使用可选的柱上 DNase I 处理来去除基因组 DNA。其他资源：
使用君主总 RNA 小量制备试剂盒成功纯化 RNA 的一般指南选择样品输入量的指南使用 Monarch Total RNA Miniprep Kit 时的 RNA 提取和纯化指南 fr全血样本产品描述
1）BL21源增强型菌株
2）最高水平的表达控制
3）miniF因子上同时含有laclq和溶菌酶
4）无需Cam
5）菌落快速培养
6）无动物来源产品
7）抗 T1 噬菌体感染（fhuA2）
概述：T7 表达 lysY/Iq E.coli 感受态细胞适用于高效级转化及蛋白表达。
基因型：MiniF lysYlacIq(CamR) / fhuA2 lacZ::T7gene1[lon] ompT gal sulA11 R(mcr-73::miniTn10--TetS)2 [dcm]R(zgb-210::Tn10--TetS) endA1 Δ(mcrCmrr)114::IS10
特性：1）在 lac 操纵子上有 T7 RNA 聚合酶，无 λ 前噬菌体
2）通过 lacIq 精确控制表达，从而允许克隆潜在的毒性基因
3）通过溶菌酶对 T7 RNA 聚合酶进行调控，从而允许克隆潜在的毒性基因
4）LysY 作为特殊的 T7 溶菌酶，因缺少酰胺酶活性从而降低细胞在诱导过程中的溶菌现象
5）Lon 和 OmpT 蛋白酶缺失
6）不受限于 DNA 是否甲基化
转化效率：
高效级：0.6–1 x 109 cfu/μg pUC19 DNA
未被转化的细胞需要检测抗 Φ80 噬菌体感染的能力，这是检测抗 T1 噬菌体感染能力的标准检测法。此外，未转化细胞还要检测其对氨苄青霉素、四环素、卡那霉素和链霉素的敏感性。结果显示未被转化的该感受态细胞抗氯霉素。
随产品提供：
20ml SOC Outgrowth 培养基（室温贮存）
0.025 ml 50 pg/μl pUC19 对照 DNA（–20°C 贮存）
注意事项：感受态细胞应贮存于 –80°C，一旦融化，就不能再被冻存。 –20°C 贮存会显著降低其转化效率。只要温度高于 –80°C，即使未被融化，细胞转化效率也会降低为零。
